Generate QR code
Open Access
Subscription Access
Results of studying the embryogenic capacity of anthers under in vitro conditions and factors of its increase in breeding samples and lines of winter and spring rape
Abstract
It’s established that cold pretreatment of winter rape donor plants increases their embryogenic capacity more than four times and is more effective than pretreatment of donor buds. It’s shown that the number of passages depends on the variety specificity and the direction of explant development upon transplantation to rhizogenic medium. It’s identified that CMS sources either lack embryogenic activity, as do samples X 5/20 and X 7/20, or demonstrate it to a weak degree. The callusogenic activity of CMS sources is significantly higher and observed in all the studied samples.
About the Authors
E. N. Kulinkovich
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
Ya. E. Piliuk
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
N. L. Ermolenko
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
I. N. Sinitsa
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Russian Federation
Russian Federation
E. F. Barchevskaya
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Russian Federation
Russian Federation
References
1. Абадовская, Т.В. Особенности андрогенеза in vitro в процессе создания дигаплоидных линий рапса : автореферат дис. ... кандидата биологических наук : 03.00.15 / Абадовская Татьяна Викторовна ; Ин-т генетики и цитологии. – Минск, 1994. – 18 с.
2. Анапияев Б.Б. Искакова К.И. Гаплоидная биотехнология в ускоренной селекции Triticum aestivum L. / Б.Б. Анапияев, К.И. Искакова // Биотехнологические приемы в сохранении биоразнообразия и селекции растений: матер. Межд. науч. конф., 18–20 августа 2014 г. – Минск: ГНУ «Центральный ботанический сад Академии наук Беларуси», 2014. – С.20–22.
3. Башабаева, Б.М. Культура изолированных микроспор в создании генетически однородных и стабильных дигаплоидных генотипов ячменя / Б.М. Башабаева [и др.] // Eurasian Jornal of Applied Biotechnology. – 2013. – № 1. – C. 24–27.
4. Беккужина, С.С. Селекция пшеницы на устойчивость к грибному патогену Septoria nodorun Berk. в культуре изолированных пыльников / С.С. Беккужина, Е.А. Калашникова // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. – 2009. – № 4. – С.6–8.
5. Белинская, Е.В. Эффективность получения андрогенных гаплоидов ячменя в зависимости от способа регенерации растений, состава питательной среды и плотности инокуляции пыльников // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2013. – Т. 15, №3 (5). – С. 1571–1574.
6. Бобков, С.В. Эмбриоидогенез в культуре изолированных пыльников проса / С.В. Бобков // Зернобобовые и крупяные культуры. – 2013. – № 1 (5). – С. 3–9.
7. Бобков, С.В. Эмбриоиды и растения-регенеранты в культуре изолированных пыльников гороха (Pisum sativum L.) / С.В. Бобков // Зернобобовые и крупяные культуры. – 2012. – № 4. – С. 74–82.
8. Бобков, С.В. Использование питательной среды N6 в культуре in vitro изолированных пыльников гороха / С.В. Бобков // Зернобобовые и крупяные культуры. – 2016. – № 4. – С. 26–30.
9. Бобков, С.В. Репрограммирование изолированных микроспор гороха на эмбриогенный путь развития / С.В. Бобков // Зернобобовые и крупяные культуры. – 2013. – № 3 (7). – С. 5–10.
10. Волков, Д.В. Получение дигаплоидных растений рапса из перспективных гибридных комбинаций методом андрогенеза / Д.В. Волков [и др.] // Земледелие, агрохимия, кормопроизводство, агроэкология, лесное хозяйство. – 2013. – С. 83–90.
11. Давоян, Э.И. Оптимизация условий культивирования изолированных пыльников риса / Э.И. Давоян, Е.Г. Кучменко, Г.А. Сингильдин // Сельскохозяйственная биология. – 1988. – № 4. – С. 59–61.
12. Дьячук, Т.И. Цитологическое подтверждение спорофитного развития микроспор в культуре пыльников тритикале без холодового воздействия / Т.И. Дьячук [и др.] // Сельскохозяйственная биология. – 2010. – № 5. – С. 61–65.
13. Ержибаева, Р.С. Скрининг образцов тритикале в культуре пыльников in vitro / Р.С. Ержибаева [и др.] // Генофонд и селекция растений: матер. IV Межд. научно-практ. конф. (4–6 апреля 2018 г., Новосибирск, Россия). – Новосибирск: ИЦиГ СО РАН, 2018. – С.110–114.
14. Илюшко, М.В. Сравнительный анализ питательных сред для регенерации растений риса из каллуса в культуре пыльников in vitro / М.В. Илюшко // Известия ТСХА. – 2017. – Вып. 2. – С. 126–130.
15. Сельдимирова, О.А. Оценка коллекции генотипов яровоймягкой пшеницы по отзывчивости изолированных пыльников в условиях культуры in vitro / О.А. Сельдимирова, Н.Н. Круглова, В.И. Никонов // Биология, биохимия и генетика. Известия Уфимского научного центра РАН. – 2011. – № 2. – С. 22–25.
16. Пилюк, Я.Э. Использование культуры пыльников in vitro в селекции ярового рапса / Я.Э. Пилюк, Т.В. Абадовская, В.В. Морозова // Земледелие и селекция в Беларуси: сб. науч. тр. ИЗиС. – Минск, 2003. – Вып. 39. – С. 249–256.
17. Пилюк, Я.Э. Комплексная фенотипическая оценка селекционных форм и линий озимого рапса, содержащих факторы цитоплазматической мужской стерильности / Я.Э. Пилюк [и др.] / Доклады НАН Беларуси. – 2024. – Т. 68, № 6. – С. 519–528.
18. Уразалиев, К.Р. Гаплоидные технологии в селекции растений / К.Р. Уразалиев // Биотехнология. Теория и практика. – 2015. – № 3. – С. 33–43.
19. Keller, W.A. High frequency of microspore-derived plants from Brassica napus anther cultures / W.A. Keller, K.C. Armstrong // Z. Pflanzen-zuchtg. – 1978. – 80. – P. 100–108.
20. Dunwell, J.M. Haploids in flowering plants: origins and exploration / J.M. Dunwell // Plant biotechnology journal. – 2010. – Vol. 8. – Р. 377–424.
Review
For citations:
Kulinkovich E.N., Piliuk Ya.E., Ermolenko N.L., Sinitsa I.N., Barchevskaya E.F. Results of studying the embryogenic capacity of anthers under in vitro conditions and factors of its increase in breeding samples and lines of winter and spring rape. Сrop Farming and Plant Growing. 2025;(3):25-30. (In Russ.)
Views:
28
Email this article 